Littérature scientifique sur le sujet « Patient-derived organoids »
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Articles de revues sur le sujet "Patient-derived organoids"
Maier, Christopher Fabian, Lei Zhu, Lahiri Kanth Nanduri, Daniel Kühn, Susan Kochall, May-Linn Thepkaysone, Doreen William et al. « Patient-Derived Organoids of Cholangiocarcinoma ». International Journal of Molecular Sciences 22, no 16 (12 août 2021) : 8675. http://dx.doi.org/10.3390/ijms22168675.
Texte intégralLee, Chansu, Sung-Noh Hong, Eun-Ran Kim, Dong-Kyung Chang et Young-Ho Kim. « Epithelial Regeneration Ability of Crohn’s Disease Assessed Using Patient-Derived Intestinal Organoids ». International Journal of Molecular Sciences 22, no 11 (2 juin 2021) : 6013. http://dx.doi.org/10.3390/ijms22116013.
Texte intégralWeeber, Fleur, Marc van de Wetering, Marlous Hoogstraat, Krijn K. Dijkstra, Oscar Krijgsman, Thomas Kuilman, Christa G. M. Gadellaa-van Hooijdonk et al. « Preserved genetic diversity in organoids cultured from biopsies of human colorectal cancer metastases ». Proceedings of the National Academy of Sciences 112, no 43 (12 octobre 2015) : 13308–11. http://dx.doi.org/10.1073/pnas.1516689112.
Texte intégralValeri, Nicola. « Abstract IA010 : Patient derived organoids in precision oncology ». Cancer Research 82, no 23_Supplement_1 (1 décembre 2022) : IA010. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.crc22-ia010.
Texte intégralMcQueeney, Kelley E., Patrick Bhola, Sarah J. Hill et Anthony Letai. « Abstract 4309 : Early apoptotic measurements of patient-derived organoids predict patient response to therapy ». Cancer Research 83, no 7_Supplement (4 avril 2023) : 4309. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.am2023-4309.
Texte intégralSondorp, Luc H. J., Vivian M. L. Ogundipe, Andries H. Groen, Wendy Kelder, Annelies Kemper, Thera P. Links, Robert P. Coppes et Schelto Kruijff. « Patient-Derived Papillary Thyroid Cancer Organoids for Radioactive Iodine Refractory Screening ». Cancers 12, no 11 (31 octobre 2020) : 3212. http://dx.doi.org/10.3390/cancers12113212.
Texte intégralKoedoot, Esmee, Inez van Weersch, Gakuro Harada, Masahiko Watanabe, Hamdy Warda, Hideaki Kyan, Yasmine Abouleila et al. « Abstract 157 : Patient in the lab : Down-scaling patient-derived organoid screening for diagnostic purposes ». Cancer Research 83, no 7_Supplement (4 avril 2023) : 157. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.am2023-157.
Texte intégralCostales-Carrera, Alba, Asunción Fernández-Barral, Pilar Bustamante-Madrid, Orlando Domínguez, Laura Guerra-Pastrián, Ramón Cantero, Luis del Peso, Aurora Burgos, Antonio Barbáchano et Alberto Muñoz. « Comparative Study of Organoids from Patient-Derived Normal and Tumor Colon and Rectal Tissue ». Cancers 12, no 8 (15 août 2020) : 2302. http://dx.doi.org/10.3390/cancers12082302.
Texte intégralVerissimo, Carla S., Lidwien Smabers, Emerens Wensink, Esmee Koedoot, Maarten Huismans, Celia Higuera Barón, Ricardo Korporaal et al. « Abstract 4112 : Patient derived organoids predict clinical response : A patient in the lab ». Cancer Research 82, no 12_Supplement (15 juin 2022) : 4112. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.am2022-4112.
Texte intégralPernik, Mark N., Cylaina E. Bird, Jeffrey I. Traylor, Diana D. Shi, Timothy E. Richardson, Samuel K. McBrayer et Kalil G. Abdullah. « Patient-Derived Cancer Organoids for Precision Oncology Treatment ». Journal of Personalized Medicine 11, no 5 (17 mai 2021) : 423. http://dx.doi.org/10.3390/jpm11050423.
Texte intégralThèses sur le sujet "Patient-derived organoids"
Raimondi, Giulia. « Broadening Adenoviral Oncolysis in PDAC : Interrogation of Patient-Derived Organoids for personalized virotherapy and modulation of miRNA content to boost adenoviral potency ». Doctoral thesis, Universitat de Barcelona, 2020. http://hdl.handle.net/10803/671205.
Texte intégralSeitlinger, Joseph. « Optimisation d’un modèle d’organoïde de cancer du poumon vascularisé dérivé de patient à des fins de médecine de précision ». Electronic Thesis or Diss., Strasbourg, 2022. http://www.theses.fr/2022STRAJ022.
Texte intégralDespite numerous recent advances, lung cancer is the leading cause of cancer mortality worldwide. Every year, new therapeutic drugs are developed to fight this disease whose prognosis remains poor. The development of precision medicine should make it possible to improve its effectiveness. In this perspective, we have optimized an organoid model derived from lung cancer patients. In this work, we were able to show that our model is reproducible and that it mimics the patient's tumor. Finally, the formation of a vascular network at the level of the organoid is possible : it can infiltrate the formed organoid but can also grow from the organoid to infiltrate the microenvironment. The model that we put forward thus meets the specifications of a patient Avatar model. The tests of therapeutic drugs or irradiation that we are currently carrying out will allow us to define if this model is compatible with a future use in clinical practice to improve the management of patients diagnosed with lung cancer
Morice, Pierre-Marie. « Evaluation de la déficience de la recombinaison homologue et de la réponse des tumeurs ovariennes aux inhibiteurs de PARP grâce à l'utilisation de modèles de culture 3D en vue du développement d'un test prédictif Identifying eligible patients to PARP inhibitors : from NGS-based tests to promising 3D functional assays Automated scoring for assessment of RAD51-mediated homologous recombination in patient-derived tumor organoids of ovarian cancers Risk of myelodysplastic syndrome and acute myeloid leukemia related to PARP inhibitors : a combined approach using a safety meta-analysis of placebo randomized controlled trials and the World Health Organization's pharmacovigilance database The long non-coding RNA ‘UCA1’ modulates the response to chemotherapy of ovarian cancer through direct binding to miR-27a-5p and control of UBE2N levels ». Thesis, Normandie, 2020. http://www.theses.fr/2020NORMC414.
Texte intégralWorldwide each year, more than 150 000 women die from epithelial ovarian cancer largely due to emergence of resistance to chemotherapy. Approximately half of these cancers display molecular alterations that cause deficiency of DNA repair via homologous recombination (HRD), which confer sensitivity to PARP protein inhibitors (PARPi). To date, there is no test capable of fully identifying the HRD phenotype, thus limiting access to these treatments. In this context, we are developing functional assays based on the use of tumor explant slices and then, on the use of tumor organoids derived from ovarian tumors of chemotherapy-naive or previously treated patients. The culture of explants was unsuitable for this application and we then focused our work on tumor organoids. Tumor organoids were exposed to carboplatin (first-line treatment) and two PARP inhibitors (olaparib and niraparib) used for maintenance therapy. In parallel, we collected clinical data from patients (survival, platinum-free interval, RECIST, treatments) to evaluate the predictive potential of these models. The established tumor organoids responded heterogeneously to different drugs, and our results show that the organoid-based assay is capable of identifying patients highly resistant to carboplatin, suggesting that this functional assay could have a predictive value for patients treated with carboplatin. Regarding the potential of organoids in predicting PARPi response, multiple sensitivity profiles have been identified, but the correlation with clinical response has yet to be determined by studies conducted on tumor samples from patients treated with these drugs
Johansson, Seiko. « Patient-derived organoid culture for 3D culture of colorectal cancer, renal cancer and osteosarcoma ». Thesis, Uppsala universitet, Institutionen för kvinnors och barns hälsa, 2019. http://urn.kb.se/resolve?urn=urn:nbn:se:uu:diva-391043.
Texte intégralYamamoto, Takehito. « Chemosensitivity of Patient-Derived Cancer Stem Cells Identifies Colorectal Cancer Patients with Potential Benefit from FGFR Inhibitor Therapy ». Doctoral thesis, Kyoto University, 2021. http://hdl.handle.net/2433/263523.
Texte intégralGRASSI, LUDOVICA. « Development of preclinical models for Renal Cell Carcinoma ». Doctoral thesis, 2018. http://hdl.handle.net/11573/1086689.
Texte intégralChapitres de livres sur le sujet "Patient-derived organoids"
Kdimati, Said, Florian Bürtin, Michael Linnebacher et Christina Susanne Mullins. « Patient-Derived Organoids for In Vivo Validation of In Vitro Data ». Dans Methods in Molecular Biology, 111–26. New York, NY : Springer US, 2022. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-0716-2788-4_8.
Texte intégralTu, Mei-Juan, Colleen M. Yi, Gavin M. Traber et Ai-Ming Yu. « Bioengineered RNA Therapy in Patient-Derived Organoids and Xenograft Mouse Models ». Dans Methods in Molecular Biology, 191–206. New York, NY : Springer US, 2022. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-0716-2441-8_10.
Texte intégralSoroka, Carol J., David N. Assis et James L. Boyer. « Patient-Derived Organoids from Human Bile : An In Vitro Method to Study Cholangiopathies ». Dans Methods in Molecular Biology, 363–72. New York, NY : Springer New York, 2019. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4939-9420-5_24.
Texte intégralGreen, Sara, Mie S. Dam et Mette N. Svendsen. « Patient-Derived Organoids in Precision Oncology – Towards a Science of and for the Individual ? » Dans Personalized Medicine in the Making, 125–46. Cham : Springer International Publishing, 2022. http://dx.doi.org/10.1007/978-3-030-74804-3_7.
Texte intégralLefferts, Juliet W., Vera Boersma, Marne C. Hagemeijer, Karima Hajo, Jeffrey M. Beekman et Erik Splinter. « Targeted Locus Amplification and Haplotyping ». Dans Methods in Molecular Biology, 31–48. New York, NY : Springer US, 2022. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-0716-2819-5_2.
Texte intégralBurkhart, Richard A., Lindsey A. Baker et Hervé Tiriac. « Testing Susceptibility of Patient-Derived Organoid Cultures to Therapies : Pharmacotyping ». Dans Methods in Molecular Biology, 253–61. New York, NY : Springer New York, 2018. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4939-7847-2_19.
Texte intégralMariappan, Aruljothi, Theda Knauth, Roberto Pallini et Jay Gopalakrishnan. « A Three-Dimensional Organoid Culture System to Model Invasive Patterns of Patient-Derived Glioma Stem Cells ». Dans Neuromethods, 139–58. New York, NY : Springer US, 2022. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-0716-2720-4_8.
Texte intégralFeng, Liang, Wenmei Yang, Hui Zhao, Jamie Bakkum-Gamez, Mark E. Sherman et Nagarajan Kannan. « Protocol for the Detection of Organoid-Initiating Cell Activity in Patient-Derived Single Fallopian Tube Epithelial Cells ». Dans Methods in Molecular Biology, 445–54. New York, NY : Springer US, 2022. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-0716-1979-7_30.
Texte intégralMukherjee, Anubhab, Aprajita Sinha, Maheshree Maibam, Bharti Bisht et Manash K. Paul. « Organoids and Commercialization ». Dans Organoids [Working Title]. IntechOpen, 2022. http://dx.doi.org/10.5772/intechopen.104706.
Texte intégralWang, Jia, Xiaoying Feng, Zhichao Li, Yongsong Chen et Weiren Huang. « Patient-derived organoids as a model for tumor research ». Dans Progress in Molecular Biology and Translational Science. Elsevier, 2022. http://dx.doi.org/10.1016/bs.pmbts.2022.03.004.
Texte intégralActes de conférences sur le sujet "Patient-derived organoids"
Verduin, M., A. Hoeben, L. Ackermans, D. Eekers, C. Hubert, J. Rich, V. Tjan-Heijnen et M. Vooijs. « PO-340 Tumour heterogeneity in patient-derived glioblastoma organoids ». Dans Abstracts of the 25th Biennial Congress of the European Association for Cancer Research, Amsterdam, The Netherlands, 30 June – 3 July 2018. BMJ Publishing Group Ltd, 2018. http://dx.doi.org/10.1136/esmoopen-2018-eacr25.852.
Texte intégralCalandrini, Camilla, Frans Schutgens, Rurika Oka, Thanasis Margaritis, Tito Candelli, Luka Mathijsen, Carola Ammerlaan et al. « Abstract IA27 : Patient-derived organoids in pediatric cancer research ». Dans Abstracts : AACR Special Conference on the Advances in Pediatric Cancer Research ; September 17-20, 2019 ; Montreal, QC, Canada. American Association for Cancer Research, 2020. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.pedca19-ia27.
Texte intégralRen, Xiaoyu. « The culture and application of patient-derived tumour organoids ». Dans International Conference on Biological Engineering and Medical Science (ICBIOMed2022), sous la direction de Gary Royle et Steven M. Lipkin. SPIE, 2023. http://dx.doi.org/10.1117/12.2669049.
Texte intégralPuca, Loredana, Rohan Bareja, Reid Shaw, Wouter Karthaus, Dong Gao, Chantal Pauli, Juan Miguel Mosquera et al. « Abstract 992 : Patient-derived tumor organoids of neuroendocrine prostate cancer ». Dans Proceedings : AACR Annual Meeting 2017 ; April 1-5, 2017 ; Washington, DC. American Association for Cancer Research, 2017. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.am2017-992.
Texte intégralRosati, Rachele, Hallie A. Swan, Laura Scolaro, Kateryna Krytska, John M. Maris, Franz X. Schaub et Carla Grandori. « Abstract 2625 : Patient derived organoids to guide personalized neuroblastoma treatment ». Dans Proceedings : AACR Annual Meeting 2018 ; April 14-18, 2018 ; Chicago, IL. American Association for Cancer Research, 2018. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.am2018-2625.
Texte intégralKim, Seok-Young, Dong Hwi Kim, Hyeong-Seok Joo, Mi Ran Yun, Ji Yeon Lee, Sang Min Kim, Hyunki Kim, Min Hee Hong, Hye Ryun Kim et Byoung Chul Cho. « Abstract 38 : NSCLC patient-derived organoids to guide personalized therapy ». Dans Proceedings : AACR Annual Meeting 2019 ; March 29-April 3, 2019 ; Atlanta, GA. American Association for Cancer Research, 2019. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.am2019-38.
Texte intégralKim, Seok-Young, Dong Hwi Kim, Hyeong-Seok Joo, Mi Ran Yun, Ji Yeon Lee, Sang Min Kim, Hyunki Kim, Min Hee Hong, Hye Ryun Kim et Byoung Chul Cho. « Abstract 38 : NSCLC patient-derived organoids to guide personalized therapy ». Dans Proceedings : AACR Annual Meeting 2019 ; March 29-April 3, 2019 ; Atlanta, GA. American Association for Cancer Research, 2019. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.sabcs18-38.
Texte intégralSpiller, Erin, Roy Lau, Sarah Choung et Shannon M. Mumenthaler. « Abstract A18 : High-content 3D image analysis of patient-derived organoids ». Dans Abstracts : Patient-Derived Cancer Models : Present and Future Applications from Basic Science to the Clinic ; February 11-14, 2016 ; New Orleans, LA. American Association for Cancer Research, 2016. http://dx.doi.org/10.1158/1557-3265.pdx16-a18.
Texte intégralKarkampouna, Sofia, Federico la Manna, Maria R. De Filippo, Mirjam Kiener, Marta De Menna, Eugenio Zoni, Joel Grosjean et al. « Abstract B18 : Patient-derived xenograft and organoids models of prostate cancer ». Dans Abstracts : AACR Special Conference on the Evolving Landscape of Cancer Modeling ; March 2-5, 2020 ; San Diego, CA. American Association for Cancer Research, 2020. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.camodels2020-b18.
Texte intégralKhan, Syamantak, June Ho Shin, Ning Cheng, Calvin Kuo, John Sunwoo et Guillem Pratx. « Abstract B08 : High-resolution positron emission microscopy of patient-derived tumor organoids ». Dans Abstracts : AACR Special Conference on the Evolving Landscape of Cancer Modeling ; March 2-5, 2020 ; San Diego, CA. American Association for Cancer Research, 2020. http://dx.doi.org/10.1158/1538-7445.camodels2020-b08.
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