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Bars, R. G., A. M. Mitchell, C. R. Wolf et C. R. Elcombe. « Induction of cytochrome P-450 in cultured rat hepatocytes. The heterogeneous localization of specific isoenzymes using immunocytochemistry ». Biochemical Journal 262, no 1 (15 août 1989) : 151–58. http://dx.doi.org/10.1042/bj2620151.
Texte intégralDoostzadeh, J., et R. Morfin. « Effects of cytochrome P450 inhibitors and of steroid hormones on the formation of 7-hydroxylated metabolites of pregnenolone in mouse brain microsomes ». Journal of Endocrinology 155, no 2 (1 novembre 1997) : 343–50. http://dx.doi.org/10.1677/joe.0.1550343.
Texte intégralCantoni, L., M. Rizzardini, M. R. Cabello Porras, R. Carcano, M. Zappone et M. Carelli. « Interferon beta reduces phenobarbital-and beta-naphthoflavone-mediated induction of cytochrome(s) P-450 ». Pharmacological Research 31 (janvier 1995) : 364. http://dx.doi.org/10.1016/1043-6618(95)87715-0.
Texte intégralWilson, JM, MM Vijayan, CJ Kennedy, GK Iwama et TW Moon. « beta-Naphthoflavone abolishes interrenal sensitivity to ACTH stimulation in rainbow trout ». Journal of Endocrinology 157, no 1 (1 avril 1998) : 63–70. http://dx.doi.org/10.1677/joe.0.1570063.
Texte intégralHayashi, Hitomi, Eriko Taniai, Reiko Morita, Atsunori Yafune, Kazuhiko Suzuki, Makoto Shibutani et Kunitoshi Mitsumori. « Threshold dose of liver tumor promoting effect of β-naphthoflavone in rats ». Journal of Toxicological Sciences 37, no 3 (2012) : 517–26. http://dx.doi.org/10.2131/jts.37.517.
Texte intégralChatuphonprasert, Waranya, Thewtas Sangkawat, Nobuo Nemoto et Kanokwan Jarukamjorn. « Suppression of beta-naphthoflavone induced CYP1A expression and lipid-peroxidation by berberine ». Fitoterapia 82, no 6 (septembre 2011) : 889–95. http://dx.doi.org/10.1016/j.fitote.2011.05.002.
Texte intégralMohinta, Sonia, Gary Perdew et Avery August. « Aryl Hydrocarbon Receptor independent production of IL-17A in a murine model of Hypersensitivity Pneumonitis (87.12) ». Journal of Immunology 184, no 1_Supplement (1 avril 2010) : 87.12. http://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.184.supp.87.12.
Texte intégralHsu, Sheng-Yao, Je-Wen Liou, Tsung-Lin Cheng, Shih-Yi Peng, Chi-Chen Lin, Yuan-Yuan Chu, Wei-Cheng Luo, Zheng-Kai Huang et Shinn-Jong Jiang. « beta-Naphthoflavone protects from peritonitis by reducing TNF-alpha-induced endothelial cell activation ». Pharmacological Research 102 (décembre 2015) : 192–99. http://dx.doi.org/10.1016/j.phrs.2015.10.001.
Texte intégralSmith, A. G., et J. E. Francis. « Chemically-induced formation of an inhibitor of hepatic uroporphyrinogen decarboxylase in inbred mice with iron overload ». Biochemical Journal 246, no 1 (15 août 1987) : 221–26. http://dx.doi.org/10.1042/bj2460221.
Texte intégralTakanaga, Hiromi, Tomoko Yoshitake, Emi Yatabe, Shuntaro Hara et Manabu Kunimoto. « beta-Naphthoflavone disturbs astrocytic differentiation of C6 glioma cells by inhibiting autocrine interleukin-6 ». Journal of Neurochemistry 90, no 3 (août 2004) : 750–57. http://dx.doi.org/10.1111/j.1471-4159.2004.02681.x.
Texte intégralHeimark, L. D., et W. F. Trager. « Stereoselective metabolism of conformational analogs of warfarin by .beta.-naphthoflavone-inducible cytochrome P-450 ». Journal of Medicinal Chemistry 28, no 4 (avril 1985) : 503–6. http://dx.doi.org/10.1021/jm00382a021.
Texte intégralGrogan, W. M., V. M. Phillips, E. G. Schuetz, P. S. Guzelian et C. O. Watlington. « Corticosterone 6 beta-hydroxylase in A6 epithelia : a steroid-inducible cytochrome P-450 ». American Journal of Physiology-Cell Physiology 258, no 3 (1 mars 1990) : C480—C488. http://dx.doi.org/10.1152/ajpcell.1990.258.3.c480.
Texte intégralKarimzadeh, Katayoon, et Asgar Zahmatkesh. « Biomarker responses in persian sturgeon (Acipenser persicus) exposed to benzo-a-pyrene and beta-naphthoflavone ». Archives of Biological Sciences 65, no 4 (2013) : 1397–403. http://dx.doi.org/10.2298/abs1304397k.
Texte intégralkarimzadeh, katayoon. « Effects of Beta-Naphthoflavone and 3-Methylcholantheren on Biochemical Markers in Sturgeon Fish, Huso huso ». Iranian Jornal of Toxicology 10, no 3 (1 février 2016) : 13–17. http://dx.doi.org/10.29252/arakmu.10.3.13.
Texte intégralGlöckner, R., et D. Müller. « Ethoxycoumarin O-deethylation (ECOD) activity in rat liver slices exposed to beta-naphthoflavone (BNF) in vitro ». Experimental and Toxicologic Pathology 47, no 4 (janvier 1995) : 319–24. http://dx.doi.org/10.1016/s0940-2993(11)80271-x.
Texte intégralKoleva, Milena R., et Tsanko S. Stoychev. « Effect of nifedipine, verapamil and diltiazem on the enzyme-inducing activity of phenobarbital and beta-naphthoflavone ». General Pharmacology : The Vascular System 26, no 1 (janvier 1995) : 225–28. http://dx.doi.org/10.1016/0306-3623(94)e0044-m.
Texte intégralBeije, B., et L. Möller. « Beta-naphthoflavone pretreatment reduces the genotoxic effect in rat liver by 2-nitrofluorene and 2-acetylaminofluorene ». Mutation Research/Environmental Mutagenesis and Related Subjects 216, no 5 (octobre 1989) : 291. http://dx.doi.org/10.1016/0165-1161(89)90107-6.
Texte intégralLněničková, Kateřina, Lenka Skálová, Lucie Stuchlíková, Barbora Szotáková et Petra Matoušková. « Induction of xenobiotic-metabolizing enzymes in hepatocytes by beta-naphthoflavone : Time-dependent changes in activities, protein and mRNA levels ». Acta Pharmaceutica 68, no 1 (1 mars 2018) : 75–85. http://dx.doi.org/10.2478/acph-2018-0005.
Texte intégralWeimer, T. L. « Influence of beta-Naphthoflavone on 7,12-Dimethylbenz(a)anthracene Metabolism, DNA Adduction, and Tumorigenicity in Rainbow Trout ». Toxicological Sciences 57, no 2 (1 octobre 2000) : 217–28. http://dx.doi.org/10.1093/toxsci/57.2.217.
Texte intégralAubry, É., H. Rime et G. Monod. « Beta-naphthoflavone inhibits the induction of hepatic oestrogen-dependent proteins by 17alpha-ethynylestradiol in mosquitofish (Gambusia holbrooki) ». Biomarkers 10, no 6 (janvier 2005) : 439–55. http://dx.doi.org/10.1080/13547500500274248.
Texte intégralDasmahapatra, A. K., B. A. B. Wimpee, K. J. Budsberg, M. O. Dorschner, R. B. Phillips et R. J. Hutz. « Lack of effect of beta-naphthoflavone on induction of Nramp genes in adult rainbow trout Oncorhynchus mykiss ». Marine Environmental Research 50, no 1-5 (juillet 2000) : 147–51. http://dx.doi.org/10.1016/s0141-1136(00)00113-6.
Texte intégralPopp, R., J. Bauersachs, M. Hecker, I. Fleming et R. Busse. « A transferable, beta-naphthoflavone-inducible, hyperpolarizing factor is synthesized by native and cultured porcine coronary endothelial cells. » Journal of Physiology 497, no 3 (15 décembre 1996) : 699–709. http://dx.doi.org/10.1113/jphysiol.1996.sp021801.
Texte intégralFerreira, Roger Stacke, Cíntia da Cruz Chivittz, Guilherme Senna dos Santos et Juliano Zanette. « Cytochrome P450 1A mRNA in the guppy Phalloceros caudimaculatus and response to beta-naphthoflavone and environmental samples ». Aquatic Toxicology 181 (décembre 2016) : 86–93. http://dx.doi.org/10.1016/j.aquatox.2016.10.023.
Texte intégralParola, M., M. E. Biocca, G. Leonarduzzi, E. Albano, M. U. Dianzani, K. S. Gilmore, D. J. Meyer, B. Ketterer, T. F. Slater et K. H. Cheeseman. « Constitutive and inducible profile of glutathione S-transferase subunits in biliary epithelial cells and hepatocytes isolated from rat liver ». Biochemical Journal 291, no 2 (15 avril 1993) : 641–47. http://dx.doi.org/10.1042/bj2910641.
Texte intégralKessler, F. « Induction of a rat liver benzo[a]pyrene-trans-7,8-dihydrodiol glucuronidating activity by oltipraz and beta-naphthoflavone ». Carcinogenesis 18, no 1 (1 janvier 1997) : 107–14. http://dx.doi.org/10.1093/carcin/18.1.107.
Texte intégralShi, Lewis Zhichang, et Charles J. Czuprynski. « Beta-naphthoflavone causes an AhR-independent inhibition of invasion and intracellular multiplication of Listeria monocytogenes in murine hepatocytes ». Microbial Pathogenesis 47, no 5 (novembre 2009) : 258–66. http://dx.doi.org/10.1016/j.micpath.2009.08.004.
Texte intégralMüller, D., R. Glöckner et M. Rost. « Monooxygenation, cytochrome P4501A1 and P4501A1-mRNA in rat liver slices exposed to beta-naphthoflavone and dexamethasone in vitro ». Experimental and Toxicologic Pathology 48, no 5 (juillet 1996) : 433–38. http://dx.doi.org/10.1016/s0940-2993(96)80053-4.
Texte intégralCardenas-Vazquez, R., O. Yokosuka et B. H. Billing. « Enzymic oxidation of unconjugated bilirubin by rat liver ». Biochemical Journal 236, no 3 (15 juin 1986) : 625–33. http://dx.doi.org/10.1042/bj2360625.
Texte intégralPinto, Debora P., Cíntia C. Chivittz, Roger S. Ferreira, Mauricio S. Sopezki et Juliano Zanette. « Beta-naphthoflavone-inducedCYP1A expression in the guppy Jenynsia multidentata : Time-dependent response, anesthetic MS-222 effect and fin analysis ». Ecotoxicology and Environmental Safety 113 (mars 2015) : 38–44. http://dx.doi.org/10.1016/j.ecoenv.2014.11.023.
Texte intégralOyekan, A. O., J. C. McGiff et J. Quilley. « Cytochrome P-450-dependent vasodilation of rat kidney by arachidonic acid ». American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology 261, no 3 (1 septembre 1991) : H714—H719. http://dx.doi.org/10.1152/ajpheart.1991.261.3.h714.
Texte intégralHayashi, Hitomi, Eriko Taniai, Reiko Morita, Masahiro Hayashi, Daichi Nakamura, Atsushi Wakita, Kazuhiko Suzuki, Makoto Shibutani et Kunitoshi Mitsumori. « Enhanced liver tumor promotion but not liver initiation activity in rats subjected to combined administration of omeprazole and ^|^beta;-naphthoflavone ». Journal of Toxicological Sciences 37, no 5 (2012) : 969–85. http://dx.doi.org/10.2131/jts.37.969.
Texte intégralPOMPON, Denis. « cDNA cloning and functional expression in yeast Saccharomyces cerevisiae of beta-naphthoflavone-induced rabbit liver P-450 LM4 and LM6 ». European Journal of Biochemistry 177, no 2 (novembre 1988) : 285–93. http://dx.doi.org/10.1111/j.1432-1033.1988.tb14375.x.
Texte intégralGao, Xiyu, Dewei He, Dianfeng Liu, Guiqiu Hu, Yufei Zhang, Tianyu Meng, Yingchun Su et al. « Beta-naphthoflavone inhibits LPS-induced inflammation in BV-2 cells via AKT/Nrf-2/HO-1-NF-κB signaling axis ». Immunobiology 225, no 4 (juillet 2020) : 151965. http://dx.doi.org/10.1016/j.imbio.2020.151965.
Texte intégralSuzuki, Shugo, Kentaro Takeshita, Yuko Doi, Makoto Asamoto, Satoru Takahashi, Aya Naiki-Ito et Tomoyuki Shirai. « 2-Amino-3,8-Dimethylimidazo[4,5-f ]Quinoxaline (MeIQx)–Induced Hepatocarcinogenesis Is Not Enhanced by CYP1A Inducers, Alpha- and Beta-Naphthoflavone ». Toxicologic Pathology 38, no 4 (6 mai 2010) : 583–91. http://dx.doi.org/10.1177/0192623310367808.
Texte intégralHapgood, J., S. Cuthill, P. Söderkvist, A. Wilhelmsson, I. Pongratz, R. H. Tukey, E. F. Johnson, J. A. Gustafsson et L. Poellinger. « Liver cells contain constitutive DNase I-hypersensitive sites at the xenobiotic response elements 1 and 2 (XRE1 and -2) of the rat cytochrome P-450IA1 gene and a constitutive, nuclear XRE-binding factor that is distinct from the dioxin receptor ». Molecular and Cellular Biology 11, no 9 (septembre 1991) : 4314–23. http://dx.doi.org/10.1128/mcb.11.9.4314-4323.1991.
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Texte intégralKoponen, Kari, Ossi Ritola, Sirpa Huuskonen, Dan Linder, Katalin Monostory et Pirjo Lindström-Seppä. « Intrastrain and interstrain variability in biotransformation enzyme activities of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) ». Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences 54, no 12 (1 décembre 1997) : 2901–6. http://dx.doi.org/10.1139/f97-191.
Texte intégralHsu, Sheng-Yao, Je-Wen Liou, Tsung-Lin Cheng, Shih-Yi Peng, Chi-Chen Lin, Yuan-Yuan Chu, Wei-Cheng Luo, Zheng-Kai Huang et Shinn-Jong Jiang. « Corrigendum to “beta-Naphthoflavone protects from peritonitis by reducing TNF-alpha-induced endothelial cell activation” [Pharmacol. Res. 102 (2015) 192–199] ». Pharmacological Research 104 (février 2016) : 206. http://dx.doi.org/10.1016/j.phrs.2016.01.024.
Texte intégralKAWAHARA, Shiro, Narisato HIRAI, Mitsuru ARAI et Norihisa TATARAZAKO. « Effects of in vivo Combined Exposure of Japanese Medaka (Oryzias latipes) to a Proestrogen, trans-Stilbene, and a CYP1A Inducer, .BETA.-naphthoflavone ». Journal of Environmental Chemistry 19, no 3 (2009) : 371–80. http://dx.doi.org/10.5985/jec.19.371.
Texte intégralSzychowski, Konrad A., Kamila Rybczyńska-Tkaczyk, Jan Gmiński et Anna K. Wójtowicz. « The interference of alpha- and beta-naphthoflavone with triclosan effects on viability, apoptosis and reactive oxygen species production in mouse neocortical neurons ». Pesticide Biochemistry and Physiology 168 (septembre 2020) : 104638. http://dx.doi.org/10.1016/j.pestbp.2020.104638.
Texte intégralBastien, Marie-Claude, et Jean-Pierre Villeneuve. « Characterization of cytochrome P450 2E1 activity by the [14C]nitrosodimethylamine breath test ». Canadian Journal of Physiology and Pharmacology 76, no 7-8 (1 juillet 1998) : 756–63. http://dx.doi.org/10.1139/y98-087.
Texte intégralBars, R. G., et C. R. Elcombe. « Dose-dependent acinar induction of cytochromes P450 in rat liver. Evidence for a differential mechanism of induction of P450IA1 by β-naphthoflavone and dioxin ». Biochemical Journal 277, no 2 (15 juillet 1991) : 577–80. http://dx.doi.org/10.1042/bj2770577.
Texte intégralMohinta, Sonia, Avery August et Gary Perdew. « Role of Aryl hydrocarbon receptor and the effect of selective AhR modulators on T cell differentiation (P1201) ». Journal of Immunology 190, no 1_Supplement (1 mai 2013) : 50.43. http://dx.doi.org/10.4049/jimmunol.190.supp.50.43.
Texte intégralLee, Y., H. Kim et J. Lee. « Molecular cloning and expression analysis of Gluttonous goby (Chasmichthys gulosus) liver cytochrome P450 1A (CYP1A) induced by PAHs (beta-naphthoflavone, benzo(a)pyrene) ». Comparative Biochemistry and Physiology Part A : Molecular & ; Integrative Physiology 151, no 1 (septembre 2008) : S26. http://dx.doi.org/10.1016/j.cbpa.2008.05.099.
Texte intégralWang, Chun, Can-Xin Xu, Yiwen Bu, Kathleen M. Bottum et Shelley A. Tischkau. « Beta-naphthoflavone (DB06732) mediates estrogen receptor-positive breast cancer cell cycle arrest through AhR-dependent regulation of PI3K/AKT and MAPK/ERK signaling ». Carcinogenesis 35, no 3 (26 octobre 2013) : 703–13. http://dx.doi.org/10.1093/carcin/bgt356.
Texte intégralRaza, H., et N. G. Avadhani. « Hepatic mitochondrial cytochrome P-450 system. Purification and characterization of two distinct forms of mitochondrial cytochrome P-450 from beta-naphthoflavone-induced rat liver. » Journal of Biological Chemistry 263, no 19 (juillet 1988) : 9533–41. http://dx.doi.org/10.1016/s0021-9258(19)76575-2.
Texte intégralYim, Bora, Hokyun Kim, Jisoo Kim, Haeyeon Kim, Eun-Ji Won et Young-Mi Lee. « Identification and molecular characterization of cytochrome P450 (CYP450) family genes in the marine ciliate Euplotes crassus : The effect of benzo[ a ]pyrene and beta-naphthoflavone ». Comparative Biochemistry and Physiology Part C : Toxicology & ; Pharmacology 196 (juin 2017) : 71–80. http://dx.doi.org/10.1016/j.cbpc.2017.03.012.
Texte intégralCallaway, Danielle A., Weiwu Jiang, Lihua Wang, Krithika Lingappan et Bhagavatula Moorthy. « Oxygen-mediated lung injury in mice lacking the gene for NRF2 : Rescue with the cytochrome P4501A-inducer, beta-naphthoflavone (BNF), and differential sex-specific effects ». Free Radical Biology and Medicine 160 (novembre 2020) : 208–18. http://dx.doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2020.07.027.
Texte intégralMorado, Claudio Nona, Magda Fernandes de Andrade-Tubino, Benjamin Carvalho Teixeira Pinto et Francisco Gerson Araujo. « The Cichlidae fish Geophagus brasiliensis (Quoy & ; Gaimard, 1824) has suitability as a sentinel species for changes caused by xenobiotics ? » Acta Scientiarum. Biological Sciences 44 (28 juillet 2022) : e59921. http://dx.doi.org/10.4025/actascibiolsci.v44i1.59921.
Texte intégralStrobel, Anneli, Roger Lille-Langøy, Helmut Segner, Patricia Burkhardt-Holm, Anders Goksøyr et Odd André Karlsen. « Xenobiotic metabolism and its physiological consequences in high-Antarctic Notothenioid fishes ». Polar Biology 45, no 2 (26 décembre 2021) : 345–58. http://dx.doi.org/10.1007/s00300-021-02992-4.
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