Academic literature on the topic 'SXT/R391'

ABSTRACT Integrating conjugative elements (ICEs) are self-transmissible, mobile elements that are widespread among bacteria. Following their excision from the chromosome, ICEs transfer by conjugation, a process initiated by a single-stranded DNA break at a specific locus called the origin of transfer (oriT). The SXT/R391 family of ICEs includes SXTMO10, R391, and more than 25 related ICEs found in gammaproteobacteria. A previous study mapped the oriT locus of SXTMO10 to a 550-bp intergenic region between traD and s043. We suspected that this was not the correct oriT locus, because the identical traD-s043 region in R391 and other SXT/R391 family ICEs was annotated as a gene of an unknown function. Here, we investigated the location and structure of the oriT locus in the ICEs of the SXT/R391 family and demonstrated that oriT SXT corresponds to a 299-bp sequence that contains multiple imperfect direct and inverted repeats and is located in the intergenic region between s003 and rumB′. The oriT SXT locus is well conserved among SXT/R391 ICEs, like R391, R997, and pMERPH, and cross-recognition of oriT SXT and oriT R391 by R391 and SXTMO10 was demonstrated. Furthermore, we identified a previously unannotated gene, mobI, located immediately downstream from oriT SXT, which proved to be essential for SXTMO10 transfer and SXTMO10-mediated chromosomal DNA mobilization. Deletion of mobI did not impair the SXTMO10-dependent transfer of the mobilizable plasmid CloDF13, suggesting that mobI has no role in the assembly of the SXTMO10 mating pair apparatus. Instead, mobI appears to be involved in the recognition of oriT SXT.

ABSTRACT Integrative and conjugative elements (ICEs) of the SXT/R391 family are key drivers of the spread of antibiotic resistance in Vibrio cholerae, the infectious agent of cholera, and other pathogenic bacteria. The SXT/R391 family of ICEs was defined based on the conservation of a core set of 52 genes and site-specific integration into the 5′ end of the chromosomal gene prfC. Hence, the integrase gene int has been intensively used as a marker to detect SXT/R391 ICEs in clinical isolates. ICEs sharing most core genes but differing by their integration site and integrase gene have been recently reported and excluded from the SXT/R391 family. Here we explored the prevalence and diversity of atypical ICEs in GenBank databases and their relationship with typical SXT/R391 ICEs. We found atypical ICEs in V. cholerae isolates that predate the emergence and expansion of typical SXT/R391 ICEs in the mid-1980s in seventh-pandemic toxigenic V. cholerae strains O1 and O139. Our analyses revealed that while atypical ICEs are not associated with antibiotic resistance genes, they often carry cation efflux pumps, suggesting heavy metal resistance. Atypical ICEs constitute a polyphyletic group likely because of occasional recombination events with typical ICEs. Furthermore, we show that the alternative integration and excision genes of atypical ICEs remain under the control of SetCD, the main activator of the conjugative functions of SXT/R391 ICEs. Together, these observations indicate that substitution of the integration/excision module and change of specificity of integration do not preclude atypical ICEs from inclusion into the SXT/R391 family. IMPORTANCE Vibrio cholerae is the causative agent of cholera, an acute intestinal infection that remains to this day a world public health threat. Integrative and conjugative elements (ICEs) of the SXT/R391 family have played a major role in spreading antimicrobial resistance in seventh-pandemic V. cholerae but also in several species of Enterobacteriaceae. Most epidemiological surveys use the integrase gene as a marker to screen for SXT/R391 ICEs in clinical or environmental strains. With the recent reports of closely related elements that carry an alternative integrase gene, it became urgent to investigate whether ICEs that have been left out of the family are a liability for the accuracy of such screenings. In this study, based on comparative genomics, we broaden the SXT/R391 family of ICEs to include atypical ICEs that are often associated with heavy metal resistance.

ABSTRACT The SXT element, a conjugative, self-transmissible, integrating element (a constin) originally derived from a Vibrio cholerae O139 isolate from India, and IncJ element R391, originally derived from a South African Providencia rettgeri isolate, were found to be genetically and functionally related. Both of these constins integrate site specifically into the Escherichia coli chromosome at an identical attachment site within the 5′ end of prfC. They encode nearly identical integrases, which are required for chromosomal integration, excision, and extrachromosomal circularization of these elements, and they have similar tra genes. Therefore, these closely related constins have virtually identical mechanisms for chromosomal integration and dissemination. The presence of either element in a recipient cell did not significantly reduce its ability to acquire the other element, indicating that R391 and SXT do not encode surface exclusion determinants. In cells harboring both elements, SXT and R391 were integrated in tandem fashion on the chromosome, and homologous recombination appeared to play little or no role in the formation of these arrays. Interference between R391 and SXT was detected by measuring the frequency of loss of an unselected resident element upon introduction of a second selected element. In these assays, R391 was found to have a stronger effect on SXT stability than vice versa. The level of expression and/or activity of the donor and recipient integrases may play a role in the interference between these two related constins.

Abstract Objectives To characterize the genetic environment of the carbapenem resistance determinant in Proteus vulgaris of swine origin. Methods The carbapenem-resistant P. vulgaris strain BC22 was isolated from a faecal swab from a diseased pig with diarrhoea in Sichuan Province of China in 2018. The presence of carbapenemase genes was screened by PCR. WGS and bioinformatics analysis were performed to analyse the genetic environment of the carbapenem resistance determinant. Results P. vulgaris strain BC22 was found to harbour the carbapenemase gene blaNDM-1. WGS data revealed that blaNDM-1 was located in a truncated ISAba125 composite transposon. The carbapenem resistance gene blaNDM-1 and 20 other resistance genes, including the multiresistance gene cfr and the bifunctional aminoglycoside/quinolone resistance gene aac(6′)-lb-cr, were located in a novel SXT/R391 integrative and conjugative element (ICE). This new SXT/R391 ICE of 148.7 kb was chromosomally located, and could be transferred to Escherichia coli. Conclusions Here, we report a carbapenemase gene, blaNDM-1, integrated into an SXT/R391 ICE. Our study highlights that this SXT/R391 ICE may facilitate the dissemination of clinically important resistance genes such as blaNDM-1, cfr and aac(6′)-lb-cr.

ABSTRACT SXT is an integrative and conjugative element (ICE) isolated from Vibrio cholerae. This ∼100-kb ICE encodes resistance to multiple antibiotics and integrates site specifically into the chromosome. SXT excises from the chromosome to form a circular but nonreplicative extrachromosomal molecule that is required for its transfer. Here we found that a significant fraction of freshly isolated SXT exconjugants contained tandem SXT arrays. There was heterogeneity in the size of the SXT arrays detected in single exconjugant colonies. Some arrays consisted of more than five SXTs arranged in tandem. These extended arrays were unstable and did not persist during serial passages. The mechanism accounting for the generation of SXT arrays is unknown; however, array formation was not dependent upon recA and appeared to depend on conjugative transfer. While such arrays did not alter the transfer frequency of wild-type SXT, they partially complemented the transfer deficiency of a Δxis SXT mutant, which is ordinarily unable to generate the extrachromosomal intermediate required for SXT transfer. Exconjugants derived from donor strains that harbored tandem arrays of SXT and R391, an SXT-related element, contained functional hybrid elements that arose from recA-independent recombination between the two ICEs. Thus, arrays of SXT-related elements promote the creation of novel ICEs.

ABSTRACTIntegrative and conjugative elements (ICEs) of the SXT/R391 family are the main contributors to acquired multidrug resistance in the seventh pandemic lineage ofVibrio cholerae, the etiological agent of the diarrheal disease cholera. Conjugative transfer of SXT/R391 ICEs is triggered by antibiotics and agents promoting DNA damage through RecA-dependent autoproteolysis of SetR, an ICE-encoded λ CI-like repressor. Here, we describe the role of CroS, a distant λ Cro homolog, as a key component contributing to the regulation of expression of the activator SetCD that orchestrates the expression of the conjugative transfer genes. We show that deletion ofcroSabolishes the SOS response-dependent induction of SXT despite the presence of a functionalsetRgene. Using quantitative reverse transcription-PCR andlacZreporter assays, we also show that CroS repressessetRandsetCDexpression by binding to operator sites shared with SetR. Furthermore, we provide evidence of an additional operator site bound by SetR and CroS. Finally, we show that SetCD expression generates a positive feedback loop due to SXT excision and replication in a fraction of the cell population. Together, these results refine our understanding of the genetic regulation governing the propagation of major vectors of multidrug resistance.IMPORTANCEHealthcare systems worldwide are challenged by an alarming drug resistance crisis caused by the massive and rapid propagation of antibiotic resistance genes and the associated emergence of multidrug-resistant pathogenic bacteria. SXT/R391 ICEs contribute to this phenomenon not only in clinical and environmental vibrios but also in several members of the familyEnterobacteriaceae. We have identified and characterized here the regulator CroS as a key factor in the stimulation of conjugative transfer of these ICEs in response to DNA-damaging agents. We have also untangled conflicting evidence regarding autoactivation of transfer by the master activator of SXT/R391 ICEs, SetCD. Discovery of CroS provides a clearer and more complete understanding of the regulatory network that governs the dissemination of SXT/R391 ICEs in bacterial populations.

ABSTRACT Integrating conjugative elements (ICEs) are mobile genetic elements that can transfer from the chromosome of a host to the chromosome of a new host through the process of excision, conjugation, and integration. Although SXT/R391-related ICEs, originally demonstrated in Vibrio cholerae O139 isolates, have become prevalent among V. cholerae isolates in Asia, the prevalence of the ICEs among Gram-negative bacteria other than Vibrio spp. remains unknown. In addition, SXT/R391-related ICEs carrying genes conferring resistance to extended-spectrum cephalosporins have never been described. Here we carried out a genetic analysis of a cefoxitin-resistant Proteus mirabilis clinical isolate, TUM4660, which revealed the presence of a novel SXT/R391-related ICE, ICEPmiJpn1. ICEPmiJpn1 had a core genetic structure showing high similarity to that of R391 and carried xis and int genes completely identical to those of R391, while an IS10-mediated composite transposon carrying bla CMY-2 was integrated into the ICE. A nucleotide sequence identical to the 3′ part of ISEcp1 was located upstream of the bla CMY-2 gene, and other genes observed around bla CMY-2 in earlier studies were also present. Furthermore, the nucleotide sequences of hot spot 2 and hot spot 4 in ICEPmiJpn1 showed high similarity to that of hot spot 2 in SXTMO10 and with a part of the nucleotide sequence found in P. mirabilis ATCC 29906, respectively. ICEPmiJpn1 was successfully transferred to Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Salmonella enterica serovar Typhimurium, and Citrobacter koseri in conjugation experiments. These observations suggest that ICEs may contribute to the dissemination of antimicrobial resistance genes among clinically relevant Enterobacteriaceae, which warrants careful observation of the prevalence of ICEs, including SXT/R391-related ICEs.

SXT/R391 integrative and conjugative elements (ICEs) were detected in 8 out of 125Proteus mirabilisisolates from food-producing animals in China. Whole-genome sequencing revealed that seven ICEs were identical to ICEPmiJpn1, carrying the cephalosporinase geneblaCMY-2. Another one, designated ICEPmiChn1, carried five resistance genes. All eight ICEs could be transferred toEscherichia colivia conjugation. The results highlight the idea that animal farms are important reservoir of the SXT/R391 ICE-containingP. mirabilis.

ABSTRACT We report here functional and topological analyses of TraG and Eex, the donor and recipient cell inner membrane proteins that mediate entry exclusion in the SXT/R391 family of integrative conjugative elements. We found that the exclusion-determining regions of the Eex variants EexS (SXT) and EexR (R391) are located in distinct yet overlapping regions of the proteins. Unexpectedly, the carboxyl-terminal regions of TraG and Eex, which contain the residues essential for exclusion activity and specificity, were found to localize in the cell cytoplasm. These observations suggest that complex topological rearrangements of conjugative proteins must occur during mating to enable these domains to interact.

Abstract Objectives To characterize a novel tigecycline resistance gene, tet(X6), and a novel SXT-related integrative and conjugative element (ICE), ICEPgs6Chn1, found in a tigecycline-resistant Proteus genomospecies 6 strain, T60. Methods Strain T60 was identified by the VITEK 2 system, biochemical reactions and an SNP-based approach. The genetic profile of strain T60 was determined by WGS analysis. ICEPgs6Chn1 was analysed by PCR, conjugation experiments and bioinformatics tools. tet(X6) was characterized by cloning and protein structure prediction. Results Strain T60 was resistant to ampicillin, tetracycline, tigecycline, florfenicol, colistin and kanamycin, but susceptible to cefotaxime; it also exhibited high MICs of eravacycline (32 mg/L) and omadacycline (>64 mg/L). Only one chromosome was identified and tet(X6) was located in chromosomal ICEPgs6Chn1, a member of the SXT/R391 ICE family, of 114 368 bp and encoding the antimicrobial resistance genes floR, strB, strA, aph(3′)-Ia, aac(3)-IV, aph(4)-Ia, tet(X6) and sul2. The circular intermediate of ICEPgs6Chn1 was detected by PCR and sequencing, but conjugation experiments showed that it was not self-transmissible. Cloning of the novel gene tet(X6) and protein structure prediction revealed that Tet(X6) confers tigecycline resistance. Conclusions To our knowledge, this is the first report of a novel SXT/R391 ICE in a Proteus genomospecies 6 strain. Importantly, a novel high-level tigecycline resistance gene, tet(X6), emerged for the first time in the SXT/R391 element of Proteus genomospecies 6, revealing that ICEs may serve as an important platform for the accumulation of antibiotic resistance genes.

Les éléments intégratifs et conjugatifs (ICEs) sont des éléments génétiques mobiles bactériens largement reconnus en tant qu'importants vecteurs de la transmission des gènes de résistance aux antibiotiques. Comme tous les éléments génétiques mobiles, ils participent grandement à la plasticité génomique de leur hôte, en permettant le transfert horizontal de gènes conférant des avantages pour l'adaptation de leur hôte à différentes conditions environnementales. Les ICEs se transfèrent horizontalement par conjugaison, par un mécanisme similaire à celui emprunté par les plasmides conjugatifs. Cependant, au contraire des plasmides, les ICEs ne possèdent pas un intermédiaire circulaire extrachromosomique réplicatif : ils s'intègrent plutôt dans le chromosome de leur hôte par recombinaison site-spécifique, à la manière d'un prophage. Une conséquence de ces deux caractéristiques est qu'ils sont également transmis verticalement lors de la division cellulaire de leur hôte. Lorsque soumis à certaines conditions, les ICEs s'excisent de leur hôte sous forme d'une molécule circulaire qui est le substrat pour leur transfert conjugatif vers un nouvel hôte. Une fois transférée, la molécule de l'ICE est recircularisée et s'intègre dans le chromosome. Les ICEs de la famille SXT/R391 sont largement distribués dans les souches de Vibrio cholerae et dans les ?-protéobactéries apparentées et ont été isolées dans une diversité d'endroits géographiques. Les membres de cette famille comportent un large squelette de gènes conservés qui codent pour leurs fonctions principales d'intégration/excision, de transfert conjugatif et de régulation. À l'intérieur de ce squelette sont retrouvées des régions.variables - dont la nature et les combinaisons diffèrent d'un élément à l'autre - qui codent pour des fonctions accessoires telles les résistances aux antibiotiques. Le patron de combinaisons des régions variables entre différents ICEs a mené à l'hypothèse qu'ils sont soumis à de fréquents échanges de matériel génétique par recombinaison. L'intégration site-spécifique de tous les membres de cette famille dans le même locus chromosomique permet la coexistence de deux ICEs semblables mais non identiques dans la même cellule, ce qui fournit un substrat à la recombinaison inter-ICE et permet la formation d'éléments hybrides. Cette thèse présente l'étude d'un nouveau système de recombinaison homologue identifié dans le squelette des ICEs SXT/R391 et sa participation dans la formation d'ICEs hybrides. Ce système de recombinaison, composé de la recombinase Bet et de l'exonucléase Exo est apparenté au système de recombinaison Red du bactériophage ? et est retrouvé chez tous les membres de la famille SXT/R391. La première portion du projet a visé l'identification des déterminants génétiques impliqués dans la formation d'hybrides. Les résultats obtenus démontrent que les ICEs hybrides peuvent être formés par trois voies différentes : i) Bet/Exo, d'une manière indépendante de RecA, ii) RecA et iii) Bet/Exo et RecA, de manière coopérative. Les résultats démontrent également que l'excision des éléments du chromosome ainsi que leur transfert conjugatif vers une nouvelle cellule ne sont pas nécessaires pour former des hybrides. Cette portion du projet met en évidence que les ICEs de la famille SXT/R391 sont capables de promouvoir leur propre diversité à l'aide du système de recombinaison homologue RecA-indépendant qu'ils codent. La deuxième partie du projet s'est portée sur la régulation de l'expression du système de recombinaison Bet/Exo. Les résultats obtenus démontrent que la transcription des gènes de recombinaison est induite en présence d'agents causant des dommages à l'ADN, par le biais des activateurs de transcription de l'ICE, SetC et SetD. Ces activateurs sont sous le contrôle du répresseur principal SetR, dont la répression est levée par les conditions qui induisent la réponse SOS de l'hôte, et sont responsables de l'expression concertée des gènes d'intégration/excision et de transfert conjugatif. Bien que la transcription des gènes de recombinaison soit fortement induite en présence d'agents induisant la réponse SOS, l'analyse de leur profil traductionnel démontre que leur traduction est fortement régulée. Des atténuateurs de traduction putatifs positionés en amont de Bet et Exo pourraient être responsables de ce niveau additionnel de régulation. L'analyse de l'organisation génétique du locus de recombinaison a mis en évidence que bet et exo font partie d'un opéron polycistronique comprenant 12 autres gènes du squelette conservé des ICEs SXT/R391, dont les fonctions ne sont pas connues. Finalement, une analyse in silico visant à identifier tous les systèmes de recombinaison apparentés au sein des génomes séquencés de bactéries, plasmides et virus a permis de démontrer qu'un nombre important de ces systèmes existent chez une diversité d'espèces bactériennes appartenant à des taxons éloignés. Bien que la majorité de ces systèmes soient codés par des bactériophages, plusieurs sont retrouvés sur des plasmides conjugatifs. L'ensemble des résultats présentés dans cette thèse permet une meilleure compréhension de l'évolution des éléments génétiques mobiles bactériens, et plus particulièrement des éléments intégratifs et conjugatifs de la famille SXT/R391.

Les éléments intégratifs et conjugatifs (ICE) de la famille SXT/R391 sont reconnus pour leur rôle prépondérant dans la propagation de la résistance aux antibiotiques parmi des populations de Gammaproteobactéries, en particulier chez Vibrio cholerae, l’agent pathogène causant le choléra. Ces éléments génétiques autonomes possèdent tous les gènes nécessaires à leur dissémination au sein d’une population bactérienne et s’intègrent normalement dans un site précis du chromosome bactérien. L’activateur SetCD et la machinerie de conjugaison encodée par les ICE permettent non seulement leur transfert conjugatif, mais également la mobilisation d’îlots génomiques, les MGI (mobilizable genomic islands). Lorsque leur transfert est enclenché sans excision au préalable, les MGI et les ICE peuvent mobiliser plusieurs centaines de kb d’ADN chromosomique adjacent à leurs sites d’insertions. Cet ADN mobilisé peut alors recombiner avec le génome de la cellule réceptrice, aboutissant à des remplacements d’allèles. En plus du squelette de gènes conservés de cette famille d’ICE, ces éléments portent une cargaison d’ADN variable qui peut coder pour des fonctions adaptatives potentiellement avantageuses pour l’hôte bactérien. Les ICE SXT/R391 portent également les gènes codant pour un système de recombinaison qui promeut la diversité de la famille en générant des ICE hybrides. Ces éléments mobiles sont extrêmement stables dans les populations bactériennes. Cette stabilité est attribuable à leur intégration au chromosome et à plusieurs composantes qu’ils contiennent, par exemple les systèmes toxine-antitoxine de la cargaison d’ADN variable ou encore le système conservé de partition des éléments excisés. La majorité des gènes portés par les ICE SXT/R391 est contrôlée par leur système de régulation qui se situe au cœur de ce projet doctoral. Ce système de régulation comprend SetR, le répresseur responsable du maintien de l’état quiescent dans lequel l’ICE est intégré au chromosome et est propagé verticalement dans la population bactérienne, c’est-à-dire au rythme de la réplication chromosomique et de la division cellulaire. Lorsque l’ADN bactérien est endommagé, il y a activation de la réponse SOS de réparation de l’ADN par RecA, un facteur de l’hôte, qui induit parallèlement l’autoprotéolyse de SetR, levant ainsi la répression exercée sur les gènes setC et setD. Ces derniers codent pour SetCD, le complexe activateur des ICE SXT/R391 qui active l’expression de la machinerie de conjugaison ainsi que d’autres fonctions codées par ces ICE. Ce projet doctoral a permis l’identification de nouvelles composantes importantes pour la régulation des ICE SXT/R391. Premièrement, nous avons généré par génie génétique plusieurs mutants qui ont permis de caractériser CroS par des essais de transfert conjugatif, de PCR quantitatif en temps réel (qRT-PCR) et d’expression avec le gène rapporteur lacZ. Nous avons déterminé que CroS est un régulateur transcriptionnel qui, avec SetR, constitue un interrupteur génétique permettant l’induction du transfert conjugatif dépendante de RecA. Nous avons également validé par gel à retardement la liaison par SetR et CroS d’un site opérateur additionnel. Des essais β galactosidase ont montré que ce site contribue à la répression des gènes croS, setC et setD. De plus, les résultats de ce projet doctoral ont clarifié certains points concernant la régulation par SetCD. Des essais d’immunoprécipitation de la chromatine couplée à la digestion avec une exonucléase (ChIP-exo) combinés avec le séquençage de l’ARN (RNA-seq) et la détermination des sites +1 d’initiation de la transcription (5’-RACE et extension d’amorces) ont permis d’établir le régulon de SetCD chez les ICE SXT/R391 et chez les MGI qu’ils mobilisent. La nécessité de SetCD dans la cellule réceptrice pour qu’il y ait intégration de l’ICE de manière site-spécifique dans l’extrémité 5’ du gène prfC a été mise en évidence à l’aide de la construction de mutants, d’essais de transfert conjugatif, de buvardage de type Southern, d’électrophorèse en champs pulsés et de PCR en temps réel. Nous avons également observé, grâce à des essais de PCR quantitatif et d’activité β galactosidase, une boucle de rétroaction positive médiée par l’activation de l’excision et de la réplication de l’ICE par SetCD. En somme, ce projet doctoral a mené à une meilleure compréhension des composantes et des mécanismes en scène pour la gouvernance de cette famille d’ICE qui sont, entres autres, d’importants vecteurs de la dissémination des résistances aux antibiotiques.

Le choléra est une infection gastro-intestinale associée à la consommation d'eau ou de nourriture contaminée par la bactérie Vibrio cholerae . Elle est caractérisée par une diarrhée sévère causée par la toxine cholérique pouvant mener à une perte de fluide de 0,5 à 1 L/h et la mort peut s'en suivre quelques heures seulement après l'apparition des symptômes. Le choléra fait des ravages dans les pays du tiers-monde. À chaque année, cinq millions de cas de choléra sont estimés mondialement dont environ 120 000 sont mortels. La plupart des cas sont répertoriés en Afrique et au sud de l'Asie ou la bactérie est endémique. Vibrio cholerae est une bactérie aquatique retrouvée dans différents écosystèmes marins qui va soit nager librement, soit croître en association au zooplancton. Dans des conditions hostiles, la bactérie est capable de persister dans l'environnement en formant du biofilm et en entrant dans un état viable mais non cultivable où son activité métabolique est réduite à un niveau indétectable. Plusieurs souches de V. cholerae ne sont pas pathogènes pour l'homme. Cependant, certaines souches ont acquis des gènes de virulence suite à leur infection par certains phages, dont CTX? qui code pour la toxine cholérique. V. cholerae a causé sept importantes pandémies qui ont débuté dans le sud de l'Asie et se sont répandues jusqu'en Europe et en Amérique. Les six premières pandémies ont été causées par le sérogroupe O1 de Vibrio cholerae . Cependant, lors de la septième pandémie, une seconde éclosion de choléra a eu lieu et le sérogroupe O139 a été associé à cette éclosion. Les souches pathogènes du sérogroupe O139 ont démontré une multiple résistance aux antibiotiques. L'étude d'une des souches cliniques a associé cette multiple résistance à l'élément intégratif et conjugatif (ICE) SXT, faisant parti d'une nouvelle classe d'éléments génétiques mobiles. SXT fait parti des ICE de la famille SXT/R391 et se dissémine par conjugaison, un processus pour lequel il code pour la machinerie requise. Les protéines de transfert des ICE SXT/R391 ont beaucoup d'homologie avec celles du plasmide conjugatif R27. Cela suggère que les ICE SXT/R391 se transféreraient selon un mécanisme similaire à R27. SXT. Par contre, certaines protéines de transfert de SXT ne sont pas synthétisées par le plasmide R27. Le gène s063 est impliqué dans le transfert conjugatif des ICE SXT/R391. Ce gène est unique aux ICE SXT/R391 et aux plasmides de la famille IncA/C. Son contexte génétique est totalement différent du contexte génétique habituel des gènes tra . Puisque les ICE de la famille SXT/R391 (et les plasmides de la famille IncA/C) sont impliqués dans la dissémination de gènes de résistance aux antibiotiques, nous avons été particulièrement intéressés à étudier la fonction de ce gène isolé dans le transfert conjugatif.

Cepas com altas taxas de mutação (mutadoras) foram detectadas em diversos gêneros bacterianos. A alta taxa de mutação está relacionada a defeitos em sistemas de reparo de DNA. Uma alta incidência de isolados clínicos de Proteus mirabilis com altas frequências de mutação foi descrita anteriormente. O fenômeno foi induzido em Escherichia coli, quando transformada com um plasmídeo de P. mirabilis. Com coleção de 77 isolados clínicos de P. mirabilis, medimos a frequência de mutantes espontâneos e verificamos a presença do elemento conjugativo ICE SXT/R391, para desvendar possível relação entre a presença do ICE e a frequência de mutação. 9 isolados clínicos apresentam o ICE. A frequência de mutantes mostrou que não existem mutadores verdadeiros, mas 11 isolados apresentam uma alta frequência de mutantes FosR. Considerando o alto índice de infecções por P. mirabilis, é importante entender a resistência à fosfomicina, já que esta é usada na clínica. Não existe relação entre uma frequência de mutantes espontânea e a presença de ICE SXT/R391 em isolados de P. mirabilis.
Strains with high mutation rates (mutators) were detected in several bacterial genera. The increased mutation rate is related to defects in DNA repair systems. A high incidence of Proteus mirabilis clinical isolates with high mutation frequencies were described previously. The phenomenon was induced in Escherichia coli, when transformed with a plasmid of P. mirabilis. 77 P. mirabilis clinical isolates were tested for the frequency of spontaneous mutants and the presence of a conjugative element found in this species, ICEs SXT/R391, to verify if there is a relation between the element and the mutation frequencies. 9 isolates carry the ICE SXT/R391. The frequency of mutants showed no true mutators among the isolates. 11 isolates show a high frequency of FosR mutants. Considering the high rate of infections by P. mirabilis, it is important to understand the fosfomycin phenomenon, since it is currently used to treat urinary infections. We have seen no relation between a high spontaneous mutation frequency and the presence of ICE SXT/R391 in isolates of P. mirabilis.